ELISA（酶聯免疫吸附實驗）是指將可溶性的抗原或抗體吸附到聚苯乙烯等固相載體上，進行免疫反應的定性和定量方法。是免疫學研究中最常用的方法之一，可用于測定抗原，也可用于測定抗體。許多人覺得ELISA檢測一般有試劑盒或者方法步驟簡單，其實在實驗過程和結果分析中大家會遇到各種問題，今就和大家分析一下常見的問題，希望對大家有所幫助。

一、ELISA實驗前準備

試劑盒的選擇

ELISA操作前，應做好實驗的設計、選擇適合自己檢測范圍和靈敏度的試劑盒、提前訂購和準備試劑及耗材、處理樣本等準備工作。 

樣本處理

在收集標本前需有一個完整的計劃，需要清楚要檢測的成份是否足夠穩定。ELISA檢測提倡新鮮標本盡早檢測，對收集后當天就進行檢測的標本，及時儲存在4℃備用，如有特殊原因需要周期收集標本，請取材后，將標本及時分裝后放在-20℃或-80℃條件下保存。因冰室與室溫存在一定溫差，蛋白極易降解，直接影響實驗質量，所以避免反復凍融。

二、ELISA實驗中的洗滌

洗滌是ELISA實驗中是最多次數的操作，也是非常重要的步驟。不嚴格的洗滌容易出現洗不干凈或交叉污染現象，實驗重復效果差的現象。不管用多道加樣器、洗瓶、吸管，還是洗板機，嚴格按照說明書操作不要減少步驟洗滌的洗滌體積、洗滌時間和洗滌次數。注意標準化操作將減少實驗誤差和不同實驗之間的誤差。操作者常出現洗板不干凈現象，請比照以下操作

a)洗液不要溢出孔外，以免污染相鄰的孔，特別是每次洗板的前兩遍，若高濃度的孔污染了低濃度的孔或空白孔，其造成的交叉污染的孔是洗不掉的，背景肯定會增高。 

b)特別注意：設計實驗的時候要考慮實驗孔的位置，保證甩掉洗液時，空白孔、低濃度孔或陰性對照組在上面或一側或分開最好。同時注意甩掉洗液的動作翻轉（從正上方旋轉120－150度）要迅速、干脆。甩板不要手腕左右搖擺、旋轉來甩液體，甩出后以直線方式補2－3次甩出液體。  

c)用干凈的濾紙，不要用衛生紙，因為細小粉塵或者碎屑容易吸附到孔底，導致洗板不干凈，結果偏高或偏低，重復孔的數值也會相差很大。 

d)每次拍板不要重復在一個地方拍，特別是洗去酶的步驟；拍板不宜過輕，否則拍不干凈，拍板很用力不會對蛋白有什么影響。但注意不要太重，以至把板條給拍斷。每次洗板后輕叩幾下，最后一次一定要扣干凈。 

e)不能減少洗液體積、洗板時間和次數。洗板時間太短，洗板效果不佳。延長洗板時間和增加洗板次數可以使背景更干凈。

三、常見問題解析

1、ELISA試驗出現非常弱的結果，常見有7種原因，其解決方法如下：

1)可能原因：溫育的時間或者溫度不夠；

解決方法：校正溫育箱溫度。

2)可能原因：顯色反應時間太短；

解決方法：校正定時鐘準確定時。

3)可能原因：所用配制緩沖液的蒸餾水有問題；

解決方法：使用新鮮合格的蒸餾水。

4)可能原因：加入抗體/酶的稀釋液濃度太低；

解決方法：按照說明書保存試劑盒和準確配制工作液。校正移液器，吸嘴要配套，裝吸嘴時要緊密。 

5)可能原因：酶標儀濾光片不正確；

解決方法：檢查酶標儀使用的濾光片。 

6)可能原因：試劑盒沒有充分平衡；

解決方法：試劑室溫平衡至少20分鐘，確保所有試劑已平衡至室溫。

7)可能原因：不正確的試劑儲存方式；

解決方法：按照說明書要求保存試劑盒。

2、試驗的標準曲線和測定的重復性差，這是什么原因造成的？

答：試驗的標準曲線和測定的重復性差，這是典型的由測定操作引起的問題，常見原因如下： 

a)可能原因：加樣本及試劑量不準；孔間不一致；

解決方法：校正移液器，吸嘴要配套，裝吸嘴時要緊密。

重復某一樣品時，加樣時間盡可能與第一次接近；

重復測定標本，操作條件、人員等應盡可能與上次保持一致，以排除這些因素造成的不一致的可能性；

樣品稀釋前應充分混勻。 

b)可能原因：加樣過快，孔間發生污染；

解決方法：重復測定標本，操作條件、人員等應盡可能與上次保持一致，以排除這些因素造成的不一致的可能性；加樣不要過快。          

c)可能原因：加錯樣本；

解決方法：檢查記錄和試劑，是否加錯樣本。 

d)可能原因：加樣本及試劑時，加在孔壁上部非包被區；

解決方法：加樣槍頭不要貼壁。 

e)可能原因：不同批號試劑盒中組分混用；

解決方法：不同批號試劑盒中組分不可混用。 

f)可能原因：溫育時間、洗板、顯色時間不一致；

解決方法：檢查時間是否一致。

g)可能原因：孔內污染雜物；

解決方法：離心樣品，排除雜物。 

h)可能原因：試劑/樣品沒有混勻；

解決方法：充分混勻樣品和試劑。

3、 試驗結果白板，而且陽性對照不顯色，應如何分析和查找原因？

答：試驗結果白板，常見原因如下： 

a)可能原因：漏加或者誤加試劑；

解決方法：檢查試驗記錄和剩余試劑。每次加液前均應核對標簽。

b)可能原因：試劑過期；

解決方法：使用有效期內的產品。 

c)可能原因：洗板液配制中出現問題，如量筒不干凈含HRP酶抑制物（疊氮鈉等）；

解決方法：使用干凈的器皿，正確配制試劑。 

d)可能原因：溫育的時間或溫度不夠；

解決方法：校正溫育箱溫度。

e)可能原因：抗體失活或者丟失；

解決方法：更換抗體或者提高抗體濃度 

f)可能原因：酶失活或者丟失

檢查方法：把工作濃度的酶再稀釋20－100倍，取5uL加入50ul的顯色底物，終止后顯色是否能達到1.0左右，此為酶的粗略估計。

解決方法：更換酶或者提高酶的濃度。  

g)可能原因：顯色底物失活

檢查方法：加少量的工作濃度的酶，TMB是否很快顯色。

解決辦法：更換顯色底物.

4. 試驗結果空白背景高，這是什么原因造成的？

答：試驗結果空白背景高，常見原因如下：

a)可能原因：洗板不干凈；

解決方法：充分洗滌，徹底拍干；洗板要防止交叉污染；濃縮洗液準確配制；吸嘴盡可能一次性使用；加樣或加酶拍板的濾紙應棄去不用，不要反復使用，否則易造成污染。 

b)可能原因：顯色液變質或者試劑過期；

解決方法：檢查試劑盒有效期。 

c)可能原因：試劑稀釋有誤，如加酶的濃度過高；

解決方法：請按說明書所示稀釋倍數配制；

d)可能原因：蒸餾水受酶等污染；

解決方法：使用新鮮蒸餾水；

e)可能原因：試劑混用；

解決方法：不同批號試劑勿混用。 

f)可能原因：培養箱溫度超過37℃或反應時間過長。

解決方法：顯色反應時間適當縮短。

最后一問：OD值換算成樣本濃度，出現了負值，該如何處理

1.血清濃度過高，大分子雜蛋白遮蓋了抗原表位，檢測血清時要做相應的稀釋（按試劑盒說明書建議）；

2.標準曲線只取下面的4~5個濃度，把樣本的OD值全包括，這樣就把標準曲線的下端（樣本濃度集中的一段）放大了。

3.把0pg/ml點的OD值降低，低于最低樣本的OD值，同時保證標準曲線的相關系數（r>0.98），這樣低的樣本值是正值，高的樣本值會更高。

4.擬合標準曲線時，用四參數擬合分析。