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2型糖尿病心肌病(DCM)動物模型造模方法

Time:2024-04-19
2型DCM誘發性模型常用STZ聯合高糖高脂飼料誘發胰島素抵抗,按自然病程發展為DCM。常用實驗方法為高脂飼料喂養結合一次性腹腔注射STZ或多次小劑量腹腔注射STZ,實驗操作時需注意藥物的注射方法和劑量。

2型糖尿病心肌病(DCM)是糖尿病所致心血管系統損害中重要并且獨立的慢性并發癥之一,其發病不依賴于冠狀動脈疾病、高血壓、心瓣膜病及其他已知心臟疾病,表現為糖尿病患者的心肌結構和功能發生改變,出現心肌代謝紊亂和心肌纖維化,左心室肥厚、舒張期和(或) 收縮期功能障礙,并最終導致心力衰竭。

目前,基礎研究中應用的2型DCM動物模型多樣,主要包括誘發性模型(C57BL/6小鼠、Webster小鼠、SD大鼠、Wistar大鼠)、自發性模型(ob/ob小鼠、db/db小鼠、KKay小鼠、OLEFT大鼠、ZDF大鼠、GK大鼠)和轉基因模型(OVE26小鼠),后兩種模型因價格昂貴,飼養條件要求高限制其應用,而誘發性模型因對其他組織影響小,動物易存活,且操作成熟簡單,既符合2型DCM發生的實際病理過程,又便于開展實驗研究,故目前應用較廣泛。

2型DCM誘發性模型常用STZ聯合高糖高脂飼料誘發胰島素抵抗,按自然病程發展為DCM。常用實驗方法為高脂飼料喂養結合一次性腹腔注射STZ或多次小劑量腹腔注射STZ,實驗操作時需注意藥物的注射方法和劑量。

 

材料

1)實驗動物 280-320g SPF級雄性SD或Wistar大鼠;

2)藥物、試劑與設備 鏈脲佐菌素(STZ);檸檬酸鈉緩沖液;10%中性甲醛;生理鹽水;2. 5%戊二醛;醫用酒精;醫用棉球;采血針;血糖試紙;血糖儀。

 

造模方法

1)實驗大鼠適應性喂養1周;

2)以高糖高脂飼料(蔗糖20%,豬油10%,膽固醇2%,膽酸鹽1%,普通飼料67% ) 自由進食、高糖高脂乳制(蔗糖30%,豬油20%,膽固醇10%,膽酸鈉2% ) 3 mL·kg-1·d-1灌胃和蔗糖水(蔗糖含量0. 05g·mL-1)自由飲用的方法聯合喂養6周;

3)第7周末稱量體質量,若體質量≥正常組體質量均值+ 2倍標準差者為食源性肥胖大鼠,可進行造模。禁食12 h后造模大鼠一次性低劑量腹腔注射 STZ (溶解于pH 4. 5,0. 1 mmol·L-1枸櫞酸鈉緩沖液中,制成1% STZ 溶液) 28 mg·kg-1 后以原飼料繼續喂養。STZ注射后造模組每周監測空腹血糖,12周后經尾尖端采血測空腹血糖(禁食8 h) ,將空腹血糖≥11. 1 mmol·L-1,且有多飲、多尿、多食、體質量減輕等現象的大鼠納入實驗。

 

觀察指標

1一般情況觀察 :每天觀察實驗大鼠活動狀態、毛色、精神狀態、飲食、二便、體質量情況;定期醫用酒精消毒大鼠尾尖后,用采血針扎破尾尖采血、測定并記錄空腹血糖( FBG)的變化

圖注1:實驗鼠活動狀態觀察

2超聲心動圖檢查:實驗大鼠以異氟烷吸入麻醉后仰臥位固定,M型超聲模式下記錄實驗鼠心臟舒張期室間隔厚度(IVS:d)、舒張期左室內徑(LVID:d)、舒張期左室后壁厚度(LVPW:d)、收縮期室間隔厚度(IVS:s)、收縮期左室內徑(LVID:s)、收縮期左后室壁厚度(LVPW:s)及射血分數(EF%)值。每只大鼠至少觀察3個連續的心動周期,取平均值計算;

 

圖注2:超聲心動圖——造模前(左)與造模后(右)

3心臟指數測定:實驗末期,禁食12 h實驗鼠以異氟烷吸入麻醉后仰臥位固定,腹主動脈取血,生理鹽水灌注完畢后迅速處死大鼠取出心臟,預冷鹽水反復沖洗后剪除包膜和血管,用電子天平稱質量并計算心臟指數(HMI) (mg·g-1) = (心臟質量/體質量);  

4血生化指標測定:使用全自動生化分析儀檢測空腹血糖( FBG),總膽固醇( TC),甘油三酯(TG),低密度脂蛋白膽固醇(LDL-C),高密度脂蛋白膽固醇(HDL-C ) ; 使用ELISA 試劑盒檢測糖化血紅蛋白(HbA1c),空腹胰島素(FINS);

5心肌組織形態學觀察:垂直于心臟左室長軸對稱中點上下切取部分心肌,10%中性甲醛固定左心室心肌組織,常規脫水,石蠟包埋,行①HE 染色;②Masson染色,用Image-Pro Plus 6. 0圖像處理系統計算切片每個視野中的心肌膠原分數(CVF =同一圖像中膠原面積/所測視野面積),每張切片隨機選取4個視野拍照取其平均數,排除富含膠原的血管和疤痕區域;③電鏡觀察,取心尖部組織,大小1.0mm×1.0mm×1.0mm,2. 5%戊二醛固定心尖部心肌組織,乙醇、丙酮梯度脫水,環氧樹脂包埋,制作超薄切片,行醋酸鈾、檸檬酸鉛雙染色。

 

圖注:HE染色(200X)——造模前(左)造模后(右)